ФЛ6000Двойно модулиран хлорофлуоресцентен измервател

ФЛ6000Двухмодулен хлорофлуоресцентометър е най-новата модернизирана версия на FL3500 двойномодулен хлорофлуоресцентометър, предназначен за мощен научно-изследователски инструмент за задълбочено изследване на механизмите на фотосинтезата на микроводорасли, хлорофили или суспензии на кисти като синьозелени или зелени водорасли. Инструментът разполага с двуканален контрол на измерването, който контролира температурата на измерваната проба и е оборудван с еднократна светлина (STF), вградена в множество процедури за измерване, които потребителят може да модифицира, за да извърши различни задълбочени международни изследвания на хлорофлуоресценцията. Неговата основна структура е оптична измервателна глава, която съдържа стандартна чаша за проба за суспензия, вградени 3 светодиодни източника и 1 1MHz/16-битов AD преобразуван PIN диоден сигнален детектор. Печалбата и времето за кредитиране на преобразуването на AD могат да бъдат контролирани чрез софтуер. Детекторът измерва хлорофлуоресцентния сигнал с временна резолюция до 4 µs (бързата версия е 1 µs).

Области на приложение:

·Фитосинтетични свойства на растенията и скрининг на метаболитни нарушения

·Откриване на биологично и небиологично принуждение

·Проучване на устойчивостта или чувствителността на растенията

·Изследване на метаболитния хаос

·Изследване на механизма на работа на фотосинтеза

·Изследване на стратегиите за реакция на фотофизиологията на принудителните растения

Типични проби:

·Сини водорасли (сини бактерии)

·Зелени водорасли

·Хлорозелени суспензии

·Суспензия на кистите

·Отломки от растения

Функционални характеристики:

·Вградено измерване на хлорофлуоресцентната индукция, измерване на PAM (импулсна модулация), измерване на бързата флуоресцентна динамика OJIP, QA - реоксидационна динамика, преобразуване на състоянието S, хлорофлуоресцентно загасяне и други измервателни програми, са най-пълноценните хлорофлуоресцентни метри в света.

·Двойна модулационна технология за измерване на светлината с двуцветна модулация, модулирана фотохимична светлина и непрекъсната фотохимична светлина, която може да извършва измервания STF (еднократна светлина), TTF (двойна светлина) и MTF (многократна светлина) и персонализирана технология FRR (бърза скорост на повтаряне)

·Стандартна версия с временна резолюция до 4 µs, бърза версияДо 1 µs, най-високата временна резолюция на хлорофлуоресцентара

·Контролният блок е двуканален, може да се свърже с температурен сензор за контрол на температурата, свързване на измервателен блок за кислород за измерване на реакцията на Хил и т.н.

·Изключително висока чувствителност с минимална граница за откриване 100ng Chla/L

·Измерване на светлината, оптимизирана светлина, наситена еднократна рефлексна светлина Цвят и интензивност могат да бъдат персонализирани

·Конзолата е оборудвана с цветен сензорен дисплей за виждане на флуоресцентни диаграми в реално време

Технически параметри:

·Експериментална процедура: измерване на ефекта от индукция на флуоресценция на хлорофила на Каутски; PAM (модулиране на импулса)Динамика на флуоресцентното загасяванеизмерване; Бързо измерване на флуоресцентната динамика на OJIP; QA – Реоксидационна динамика; S преобразуване на състоянието; Бърза хлорофлуоресцентна индукция

• Флуоресцентни параметри:

уПАМИзмерване на динамиката на флуоресцентното загасяване: Измерване на кривата на динамиката на флуоресцентното загасяване, изчисляема F₀Фм, Фв, Ф.₀„,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ЕТРПовече от 50 хлорофлуоресцентни параметра;

уОЖИПБързо измерване на флуоресцентната динамика: измерване на бързата флуоресцентна динамична крива OJIP, изчислима F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀от FV/F₀Fv / Fm, M0, площ, фиксирана площ, SM, SS, N, Phi_P₀Пси_₀от Phi_E₀от Phi_D₀PHI_PAV, ABS / RC, TR₀/ РКи ET₀/ РКи DI₀/ РКповече от 20 параметра;

уQAQA-реоксидационна кинетика: измерване на кривата на QA-реоксидационната динамика, която се използва за адаптиране на съответните амплитуди (A1, A2, A3) и временни константи (T1, T2, T3) на бързата, средната и бавната фази на QA-реоксидационния процес.

уСПреобразуване на състоянието (S-state test): измерване на кривата на флуоресцентно разпадане в S-state test, която се използва за изчисляване на неактивната светлинна система II (PSII)_ХБрой реакционни центрове

уФлаш флуоресцентна индукция (Flash Fluorescence Induction, FFL): за подходящо изчисляване на ефективната площ на антената, връзката на антената и др.

уОсигуряване на персонализирани протоколи за PSII антена хетерогенност PSIIаСъс PSIIбетаАнализ, PSII ефективна антена сечение площ (сПСIIИзмерване на други параметри (опционална персонализирана функция)

уQA– крива на окислителната динамика иS-състояние изпитванеКрива на флуоресцентното разпадане (Ли，2010）

·Времева резолюция (честота на вземане на проби): детектор с висока чувствителност, стандартна версия с временна резолюция от 4 µs и бърза версия от 1 µs

·Минимална граница за откриване: стандартна версия 100ng Chla / L, бърза версия 1μg Chla / L

·Управление: с цветен сензорен дисплей за виждане на флуоресцентни диаграми в реално време

·Измерителна стая:

илиИзмерване на светкавицата: 623nm червена оранжева светлина и 460nm синя светлина, време на светкавица 2-5µs

илиЕдноцикълна наситена светлинна светлина: максимална светлинна интензивност 170 000 µmol (фотони) / m².s, време на светлинна светлина 20-50 µs

илиПостоянна фотохимична светлина: максимална светлинна интензивност 3500 µmol (фотони) / m².s

илиФлуоресцентен детектор: PIN оптодиод

илиADПреобразувател: 16bit

илиПроба тръба: площ на дъното 10 × 10 мм, обем 4ml

• Персонализирана камера за измерване (по избор): може да се персонализират цветовете на светлината, наситената светлина и фотохимичната светлина (синьо, синьо, кехлибар и т.н.) и диапазоните за откриване (ChlA, ChlB)

• Източник на далечна инфрачервена светлина (по избор): за измерване на F₀Дължина на вълната 730 nm

·Модул за измерване на кислорода (опционално): измерване на освобождаването на кислород от водорасли

·Контрол на температурата (опционално): регулатор TR 6000 с температурен диапазон от 5 до 60 °C, точност 0,1 °C

• Електромагнитно смесване (по избор): за смесване на проби, за да се предотврати отлагане на проби, ръчно регулиране на скоростта или автоматично управление на софтуера

• Интерфейс за комуникация: RS232 сериен порт / USB

FluorWin компаниятаСофтуер: определяне или създаване на експериментални схеми, настройки за контрол на светлинния източник, изход на данни, обработка на анализи и показване на диаграми

Типични приложения:

1. Изследователите от Института за водна биология на Китайската академия на науките, Ван Цзян, използват флуоресцентометър FL3500 (модел преди FL6000) и система за топло освобождаване на растенията TL, за да докажат, че нитритната принуда засяга първо рецепторната страна на PSII на Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). Изследването на този задълбочен механизъм на фотосинтезата често изисква комбинация на двата инструмента.

2.Изследователят Пан Чуняун от Института за екология и география в Синдзян на Китайската академия на науките и неговата тематична група използват хлорофлуоресцентометър FL3500 (модел преди FL6000) за задълбочено изследване на токсичността на различни вредни вещества за водораслите в околната среда, като тежки метали, соли, токсични съединения, хербициди, пестициди и антибиотици. Чрез уникалната програма за измерване на флуоресценцията на хлорофила с висока резолюция OJIP, QA - реоксидационна динамика и преобразуване на състоянието S, FL3500 изцяло разкрива токсичните механизми на увреждането на системата за фотосинтеза на водорасли при различни концентрации и време на обработка и техните екологични ефекти. В момента групата на Пан Янг използва FL3500 (модел преди FL6000), за да публикува повече от двадесет статии на високо ниво в международни и местни основни списания на SCI.

Произход: Чехия

Референции:

1. Manaa A, et al. 2019 г. Толерантност на солеността на киноата (Chenopodium киноаWilld) като се оценява чрез ултраструктурата на хлоропласта и фотосинтетичните характеристики. Екологична и експериментална ботаника 162: 103-114

2. Yu Z и др. 2019 г. Чувствителността на Chlamydomonas reinhardtii към кадмиев стрес е свързана с фототаксис. Наука за околната среда: процеси и въздействия 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019 г. Молекуларни механизми на температурна аклимация и адаптация при морски диатоми. Списание ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019 г. Решаване на неудобната цианобактериална евтрофикация чрез биотехнология. Приложени науки 9(12): 2566

5. Sicora C I и др. 2019 г. Регулиране на функцията PSII вцианотезаsp. ATCC 51142 по време на светло-тъмен цикъл. Изследвания на фотосинтезата 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019 г. Характеризиране на ефекта на Поест върхуХлорела вулгарисНецелеви организми. Химиосфера 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018 г. Модулация на тилакоидния протеом в растения на грах, отглеждани при различни облъчвания: количествено протеомно профилиране вмоделен организъм, подпомаган от транскриптомична интеграция на данни. Вестник на растенията 96(4): 786-800

8. Антал Т, Конюхов I, Волгушева А и др. 2018 г. Хлорофилова флуоресцентна индукционна и релаксационна система за непрекъснато наблюдение на фотосинтетичния капацитет в фотобиореактори. Физиол Плантар. ИД: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Симулация на кинетиката на възхода и разпадането на флуоресценцията на хлорофила и промените в абсорбцията, свързани с P700, чрез използване на метод на Монте-Карло, основан на правила. Изследване на фотосинтезата. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J и др. 2018 г. PsbY се изисква за предотвратяване на фотоувреждане на фотосистема II при мутант насинехоцистsp. PCC 6803. Фотосинтеза, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M и др. 2018 г. Специфичните за щама разлики в скоростта на възстановяване на Фотосистема II при пикоцианобактериите корелират с разлики в нивата на протеина FtsH и моделите на експресията на изоформите. ПЛОС ОН 13(12): e0209115.

12.Fang X и др. 2018 г. Транскриптомни отговори на морската цианобактерияПрохлорококъсна продукти от вирусна лиза. Микробиология на околната среда, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M и др. 2018 г. Чувствителността на антената към протоните определя стратегията за събиране на фотосинтетична светлина, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493